CIFOR-ICRAF aborda desafios e oportunidades locais ao mesmo tempo em que oferece soluções para problemas globais para florestas, paisagens, pessoas e o planeta.

Fornecemos evidências e soluções acionáveis ​​para transformer a forma como a terra é usada e como os alimentos são produzidos: conservando e restaurando ecossistemas, respondendo ao clima global, desnutrição, biodiversidade e crises de desertificação. Em suma, melhorar a vida das pessoas.

O CIFOR-ICRAF publica mais de 750 publicações todos os anos sobre agrossilvicultura, florestas e mudanças climáticas, restauração de paisagens, direitos, política florestal e muito mais – em vários idiomas..

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CIFOR–ICRAF publishes over 750 publications every year on agroforestry, forests and climate change, landscape restoration, rights, forest policy and much more – in multiple languages.

CIFOR–ICRAF addresses local challenges and opportunities while providing solutions to global problems for forests, landscapes, people and the planet.

We deliver actionable evidence and solutions to transform how land is used and how food is produced: conserving and restoring ecosystems, responding to the global climate, malnutrition, biodiversity and desertification crises. In short, improving people’s lives.

PCR Based Detection Of Entomopathogenic Fungus Metarhizium Anisopliae In Host Organisms

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PCR based detection and identification of the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae was conducted with specific primers F3 (5’-GGGTATATGAGAGGGAGGGC-3’) and B3 (5’- GGTTCCTGGTCGGGACTT-3’) which amplify a fragment of gene in the IGS (Intergenic spacer) region of rRNA (Ribosomal RNA) of M. anisopliae. The PCR amplification of IGS sequences yielded a unique fragment of 226-bp for all the four strains of M. anisopliae (M4, M16, M34 and M43). The results proved that the primers F3 and B3 were highly specific for M. anisopliae. PCR based detection M. anisopliae within host insects as Mealworm beetle (Tenebrio molitor) in the laboratory and cockchafer (Melolontha spp) in the field by using specific primers was applied. The PCR method could be a simple, rapid method to detect M. anisopliae within host insects just 8 days after infection. This study also showed that M. anisopliae exists in the soils in Felsrs-Köveskútpuszta region in Hungary. In fact, the results proved that DNA extracted from infected insects in laboratory and field could be used to identify the presence of the entomopathogen fungus M. anisopliae by using specific primers. Our study demonstrates an alternative approach for typing M. anisopliae strains within infected insects and reduces the need for time-consuming morphological and physiological tests.

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